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信帆生物帶你了解磁珠法DNA 提取試劑盒

更新時間:2018-05-29      瀏覽次數(shù):1504

信帆生物帶你了解磁珠法DNA 提取試劑盒

動物組織基因組 DNA 提取試劑盒(磁珠法)說明書

規(guī)格:50T

保存:磁珠可以在室溫下( 15-25℃)運(yùn)輸,但請在 4℃冰箱中保存,禁止凍存。蛋白酶 K 需-20℃保存,以保證其活性。其余試劑可以室溫保存,更長時間的保存可置于 2-8℃。復(fù)檢期 1 年。

產(chǎn)品說明:

本試劑盒采用具有*分離作用的磁珠和緩沖液系統(tǒng),可從樣品中分離純化高質(zhì)量基因組DNA。特殊包被的磁珠在一定條件下對目的 DNA 具有很強(qiáng)的親和力,而當(dāng)條件改變時,磁珠釋放吸附的 DNA,能夠達(dá)到快速分離純化 DNA 的目的。整個過程安全、便捷,提取的 DNA 純度高。使用本試劑盒純化的基因組 DNA 的 OD260/OD280 均在 1.7-1.9 之間,可以應(yīng)用于各類下游分子生物學(xué)實驗。使用前請先在漂洗液中配置 70%乙醇。若裂解液產(chǎn)生沉淀,使用前應(yīng)將試劑盒內(nèi)的溶液在室溫放置一段時間,必要時可在 37℃水浴中預(yù)熱 10min 溶解沉淀,搖勻后使用。

操作步驟:

1. 裂解

取適量的動物組織樣本(脾臟≤20 mg;肺臟≤20 mg;腎臟≤20 mg;)用液氮研磨成粉末,并迅速轉(zhuǎn)移到已加入480μl 裂解液S1、150μl裂解液S2以及20μL蛋白酶K(20 mg/mL)的EP管中,吹打或震蕩混合均勻。將EP管置于65℃水浴25~30min。待冷卻到室溫,12000rpm 4℃離心5-10min。

2. 結(jié)合

盡量取凈上清于新的1.5 mL EP管中,加入等體積的異丙醇以及振蕩混勻的50μL磁珠,顛倒混勻1 min,靜置3 min。將EP管置于磁鐵上進(jìn)行磁分離,吸棄廢液(吸凈管蓋及管底殘液)。

3. 洗滌

加入600 μL 漂洗液(使用前請預(yù)先配置70%乙醇),輕柔混勻1-2 min,將EP管置于磁力架上進(jìn)行磁分離,吸凈管蓋及管底的殘液;重復(fù)本步驟一次。

4. 洗脫

室溫晾干5~10 min至乙醇揮發(fā)*,加入50~100 μL洗脫液,緩慢抽吸混勻,65℃水浴10 min。(每隔1~2 min輕搖EP管幾下混勻)。將EP管置于磁力架上進(jìn)行磁分離,小心吸取上清液至新的EP管中,進(jìn)行下游實驗。(判斷磁珠晾干的標(biāo)準(zhǔn):側(cè)面觀察磁珠無反光,正面觀察磁珠邊緣龜裂)

信帆生物帶你了解磁珠法DNA 提取試劑盒

注意事項:

1. 動物組織(脾、肺、腎)要用液氮充分研磨。

2. 整個裂解過程操作盡量溫和,并在要求時間內(nèi)完成。

3. 如果組織液濃度較高,則建議磁珠量可適當(dāng)增加,以獲取高濃度 DNA。

4. 客戶自備試劑:異丙醇、無水乙醇、蛋白酶 K。

5. 使用前請在漂洗液瓶中預(yù)先配制 70%乙醇。

6. 磁珠在使用前一定要充分混勻。
 

常見問題及參考意見:

1. 得率低

(1)組織沒有*裂解完,裂解時間不夠或沒有離心直接進(jìn)行下一步操作:可適當(dāng)延長裂解時間,zui長不超過60 min。樣品裂解后,請一定要離心后再進(jìn)行下一步操作。

(2)結(jié)合不充分:結(jié)合過程中要使磁珠一直處于懸浮狀態(tài),并且充分顛倒混勻。

(3)取樣量大于說明書給出量:取樣量請嚴(yán)格按照說明書操作。

2. 條帶彌散

(1)樣品不新鮮或反復(fù)凍融多次:盡量用新鮮樣品進(jìn)行實驗,如果樣品需要保存,可根據(jù)實驗,分裝保存樣品,盡量避免反復(fù)凍融;

(2)環(huán)境溫度太高:可以將研缽置于-20℃預(yù)冷或置于液氮保存后再進(jìn)行研磨,如果所提取材料基因組DNA極易降解,可用液氮研磨;

(3)裂解時間太長:裂解時間不要超過60 min;

(4)提取后模板DNA放置時間太長:提取后如有需要,請盡量及時進(jìn)行凝膠電泳實驗。短期內(nèi)可置于4℃保存,長期請置于-20℃保存(盡量注意避免反復(fù)凍融)。

3. DNA液有顏色

(1)洗滌過程不充分:如果結(jié)合后磁珠呈團(tuán)狀、 絲狀或顆粒狀,可增加點(diǎn)陣力度及次數(shù),充分吹打混勻。

(2)裂解不充分:適當(dāng)增加裂解液S1和S2用量,也可以延長裂解時間。

(3)樣品用量大于說明書給出量而其他試劑用量沒有相應(yīng)調(diào)整:嚴(yán)格按照說明書操作,如果需要增大樣本量,可以等比例增加裂解液S1、S2以及磁珠用量,其他試劑用量不變。

4. DNA樣品不純,干擾后續(xù)實驗

(1)DNA液有乙醇?xì)埩簦合礈鞎r,請注意吸凈管蓋及管底的殘液。此外,磁珠應(yīng)*干燥,保證無乙醇?xì)埩簟?/span>

(2)磁珠洗滌不充分:加入70%乙醇溶液時,請吸打或點(diǎn)陣混勻。如有必要,可增加一次洗滌步驟。

(3)DNA液中吸入磁珠:如果不小心吸入磁珠,請將上清液返回原管,待磁珠*吸附至管壁后重新吸取上清。或者將吸取的上清液10000 rpm離心2 min,再取上清。

(4)DNA液中含有蛋白質(zhì)等雜質(zhì):建議適當(dāng)減少樣品用量?;蚩芍貜?fù)一次提取過程去除雜質(zhì)。

(5)DNA液中含有輕微鹽離子等雜質(zhì),此為洗脫液(含有抑制核酸降解的成分)正常現(xiàn)象,不影響實驗,可將獲得的DNA置于-20℃環(huán)境分裝保存。

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